Seit einigen Jahren hat sich die real-time PCR (real-time PCR, qPCR) in der Lebensmittelanalytik etabliert. Sei es auf dem Gebiet der Erkennung von mikrobiologischen Kontaminationen, dem Nachweis und der Quantifizierung von GVOs oder dem Tierartennachweis. Als geschlossenes System ist die Methode in der Durchführung einfach, schnell, sicher und günstig. Bei richtiger Durchführung zeigt sie eine hohe Sensitivität, geringe Anfälligkeit für Kontaminationen (falsch positive Ergebnisse) und durch die Möglichkeit der Multiplex-Technik einen hohen Durchsatz. Wir werden uns mit drei Gebieten beschäftigen, dem Nachweis von mikrobiologischen Keimen, Nachweis von GVO und der Tierartbestimmung.
Lernziele
Am Ende des Kurses werden Sie in der Lage sein Aufgaben aus den drei Fachgebieten anhand von Kits experimentell abzuarbeiten, sie können die Daten auswerten und interpretieren. Die real-time PCR typischen Fachbegriffe sind ihnen geläufig und sie können mit Ct-Werten arbeiten.
Zielgruppe
Technische oder wissenschaftliche MitarbeiterInnen. Sie haben molekularbiologische Erfahrung und arbeiten mit real-time PCR bzw. möchten demnächst mit real-time PCR arbeiten. Sie wollen mehr verstehen von dem was Sie tun.
Gut zu wissen:
Sie arbeiten mit nicht-infektiösen, nicht-vermehrungsfähigen biologischen Material.
Sie benötigen keine Kenntnisse in real-time PCR, Grundkenntnisse bzgl. DNA/RNA und klassischer PCR sind von Vorteil, können aber auch auf unserer Lernplattform wiederholt werden. Die Zugangsdaten für den Vorkurs erhalten Sie nach der Kurs-Anmeldung.
Wenn Sie unsicher sind, ob der Kurs das Richtige für Sie ist, fragen sie uns.
Wir arbeiten mit unserem eigenen real-time Cycler der neuesten Generation von BMS, baugleich mit dem RIDA(R)-Cycler und einem zweiten Leihgerät mit Unterstützung von Biozym.
Einzelne Begriffe hab ich Ihnen verlinkt auf unsere Wissensdatenbank.
"Nur der Dumme muß alle Erfahrungen selber machen." (Laotse).
Praxisteil I (qPCR, Nachweis)
Präparation von DNA mittels Säulchen Methode und Schnell-Methoden
Nachweis von z. B. Salmonella/Legionellen DNA: Arbeiten mit Sequenz-unspezifischer Detektion, Standard-Verdünnungskurve und Schmelzkurve
Interpretation einer SYBR/Eva-Green Schmelzkurve, Unterscheidung von Dimeren und Hauptprodukt, Was tun bei Dimeren?
PCR-Parameter: Bestimmung der Effizienz und des R2-Wertes aus der Standardkurve, Welche Grenzwerte muss mein qPCR einhalten? Bestimmung der Nachweisgrenze (LoD) und Quantifizierungsgrenze (LoQ).
Nachweis von Salmonella/Legionella mittels Sequenz-spezifischer Detektion Sonden-Systeme
Praxisteil II (Tierartbestimmung)
Präparation von DNA mittels Magnet-Bead Technologie
4Plex-PCR z. B. Nachweis von Schwein, Huhn und Truthahn
Diskussion von Nachweisgrenze, Quantifizierungsgrenz, Matrix-Effekte Inhibition
Praxisteil III (GVO-Nachweis)
Präparation von DNA mit schwieriger Matrix
Nachweis von gentechnisch modifizierten Organismen (GVO) mittels Multiplex Real-Time PCR
Screening für GVO: GMO SCREEN 4plex 35S/NOS/FMV+IAC
Auswertung und Trouble Shooting
Themen des Theorie-Seminars
Einführung in die real-time PCR (Wiederholung)
Prinzip der Real Time PCR
Grundlagen der Real Time PCR: Detektionsformate, Ct-Werte, Threshold, Baseline, Farbstoffe und Kanäle etc.
Real Time PCR Zielsequenzen: Sequenzen, Primer und Sonden LFGB-Methoden zum Nachweis von Pathogenen, zur Identifizierung von Arten und zum Nachweis und GVO
Lebend/tot-Nachweis über Real Time PCR
Besprechung von Nachweis, Screening- und Quantifizierungs-Kits
Diskussion an Beispielen von Nachweisgrenze und Quantifizierungsgrenze (LOD, LOQ)Nachbesprechung
Nachbesprechung
Zusätzlich biete ich eine gemeinsame Online-Fragestunde für Trouble-Shooting oder weitergehende Fragen an. Die Fragestunde wird mit GoTo-Meeting durchgeführt.
Lernplattform
Eine Lernplattform (Moodle, e-learning4science.com) hält für Sie das Script als PDF, Versuchsbeschreibungen und Literatur-Links-Downloads bereit.